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TUhjnbcbe - 2021/7/2 20:48:00

上期我们向大家介绍了“动物实验手册(二):动物实验前准备(2)”,今天我们向大家分享《物实验手册(三):动物实验前准备(3)》,《动物实验手册》送不停,欢迎在文末留言,我们将尽快与您取得联系,包邮到家!

六、常用仪器

小动物B超仪

●功能

胚胎移植过程中的检查;

子宫、卵巢等生殖系统疾病诊断;

妊娠、胎儿发育、胎儿活力和性别

鉴定的诊断;

●参考使用方法

待检动物要腹部剃毛准备,剃毛范围从剑状突软骨部下方至耻骨前缘,行腹部广泛剃毛,左侧暴露肋弓下部,右侧要暴露倒数第三根肋骨。除极少数动物腹部压痛明显,表现烦躁不安外,绝大部分动物不需镇静。由两名保定助手,采取仰卧或右侧卧保定,让患病动物躺卧于超声检查台上,头前尾后,保持放松、安静。如有特殊需要也可站立保定。在动物皮肤或探头上涂抹兽用专用吻合剂并开始检查。

检查时要注意小动物B超探头方向探头是有方向性的,为了读图方便通常设定探头的左端(通常带标记)与屏幕的左侧相一致,屏幕显示应与检查者的观测方位一致。例如,动物仰卧保定,则操作者如同站在动物尾侧进行观测,因此,在检查过程中应尽量保持探头的左端指向动物头侧(纵切面)或右侧(横切面),以使动物的头侧或右侧投影在屏幕的左侧。在检查前可根据探头上的标记调整方向,如无标记可以用手指轻压探头左端,这时指压表现在屏幕左侧则方向正确,如在右侧则需将探头翻转度。

小动物B超检查动物腹腔时的检查顺序,要考虑腹腔脏器之间的毗邻关系及疾病对腹腔脏器的系统性影响,通常建议做全腹部检查。可根据个人检查习惯制定系统检查的流程,在概览整个腹腔大体情况后,针对异常影像再做详细检查,以避免疏漏。如检查从剑状突软骨下方开始,可先概览整个肝脏及胆囊情况,然后向右(动物的左侧)移行扫查胃、脾、胰腺左支、左肾、左肾上腺及左侧卵巢;进而向后(动物的尾侧)进行膀胱及生殖系统(前列腺或子宫)检查;再移向左前(动物的右前)腹部扫查右肾、右肾上腺、右侧卵巢、胰腺右支及胰腺体,最后顺着十二指肠往下概览肠道情况;然后根据扫查过程中发现的异常情况再进一步仔细检查。

在发现可疑病变时要对局部脏器做多角度扫查,以了解其空间立体形态,并与易混淆的正常脏器结构区分,如结肠内气体和膀胱结石。还可利用变换探头角度、位置、切换探头频率、调节增益、改变动物体位等方法来提高判读的准确度。

langendorff离体心脏灌流系统

●功能

配合完成离体心脏灌流实验。

将动物心脏取出,连接到特定的灌流装置,用灌流液灌注,排除了神经和体液的控制,配合特别分析软件记录心室内压、动脉血压和心电信号,自动分析各项生理参数,用于病理生理情况下的心功能与血流动力学改变等研究,在生理、病理生理以及药理学研究中已得到广泛地应用。

离体心脏灌流系统是针对当前医学院校及科研机构的药理实验自主研发的实验产品,分为A型和B型两种型号。A型为标准型,具一道Langendorff灌流支路和一道工作心脏灌流支路,B型为双道Langendorff灌流式,可同时做两路Langendorff灌流实验。

●参考使用方法

SD大鼠Langendorff离体心脏灌注模型:称重,腹腔注射10%水合氯醛(mg/kg)麻醉,并注射肝素(U/kg)抗凝,将麻醉大鼠固定在鼠台上,刮掉胸前毛发;剑突下作切口,沿左右肋缘横向剪开腹前壁,再依次沿左右腋中线纵向剪开两胸侧壁,将胸壁翻至头侧,打开心包膜,暴露心脏;左手拇指和食指轻轻提起心脏,暴露心底血管,迅速将其剪断,取出的心脏立即放入4℃的KH灌流液中停搏;在液面下夹住主动脉断端,将套管插入主动脉,用缝线结扎固定,连接Langendorff离体心脏灌注装置,KH缓冲液经主动脉逆行灌注,恒温水箱维持体温在37℃,接测压气囊、电磁流量计和针状电极。连接多导生理记录仪采集数据。然后根据实验设计调节灌注液温度,添加实验试剂。

高速颅骨钻

●功能

主要用于动物的开颅手术

●参考使用方法

安装:

1、将各零部件从泡沫包装中取出,放置在工作台上。

2、将硬质合金麻花钻头旋转锉缓慢插入空芯轴机头孔中。(注意:应插接到位,如遇阻碍,应先拔出旋转锉并旋转一定角度后再次插装)。

3、将电源线、脚踏开关线和颅钻线依次插入机箱相应的插孔内。

操作:

1、接通电源,按动电源开关,开关指示灯亮。

2、将调速旋钮逆时针至最低转速。

3、踏下脚踏开关,电动机带动旋转锉开始旋转。

4、将转速调至所需转速,即可开始工作。

5、连续工作过程中,如需暂停,松开脚踏开关即可;再次启动,只需踏下脚踏开关。

6、关机时,首先将调速旋钮逆时针旋转至最低转速。

7、松开脚踏开关,电动机即停止转动。

8、桉下电源开关,开关指示灯熄灭,整机停止工作。

间断性缺氧设备(自制)

至上而下分别为:

密闭缺氧仓、程序化控制系统、压缩机

●功能

建立符合低氧性肺动脉高压(CHPH)的实验动物模型

实验用低氧操作的动物模型

●参考使用方法

将氧气浓度控制系统、空气压缩泵、氧气浓度测量仪及缺氧箱箱体四个相互独立的功能系统进行有机整合,通过手动控制,制作操作简单,实验成本低,系统稳定,通过调节使箱体氧浓度稳定在10%左右。

脑立体定位仪

●功能

脑立体定位仪又称脑固定装置,它是利用颅骨外面的标志或其它参考点所规定的三度坐标系统,来确定皮层下某些神经结构的位置,以便在非直视暴露下对其进行定向的刺激、破坏、药物注射、引导电位等研究。动物脑立体定位仪是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备,用于对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导电位等操作,可用于帕金森氏病动物模型建立、癫痫动物模型建立、脑内肿瘤模型建立、脑内神经干细胞移植和脑缺血等研究。

●参考使用方法

1.固定上颌:拧松上颌固定装置的旋钮,向上移动使其在0上5mm,再旋紧旋钮。

2.插入耳杆:动物麻醉后,将耳杆紧贴双耳分别插入两外耳道;然后将耳杆固定在主框上,并使两个耳杆的读数相同。耳杆是从外耳道插入的但不是无限制的往内进,插好的标志是耳廓对称外展,耳杆适配器固定且不能推动,大鼠躯干舒展。可以先固定一侧的耳棒,再进行调节,关于是否要刺破鼓膜存在争议。但是耳杆插好后,即使动物清醒过来,也无法挣脱出来。麻醉状态下,你可以把动物的身体提起/放下,动物就会以耳杆为轴心,旋转,不会脱下来。将大鼠固定后可在身体下方垫一个板子,使大鼠不下沉,方便操作。

3.固定上颌:调节“压环旋钮”使压环上移,将动物的上门齿钩住门齿板的前杆,使门齿根部紧靠杆的上缘;旋松调节槽上“固定旋钮”,在主框上前后移动至头自然伸展、然后固定;下移“压环旋钮”,夹紧头部。

小动物呼吸机

●功能

动物呼吸机是常用的实验设备,广泛用于基础医学、临床医学和动物医学等科学研究实验中的人工呼吸、呼吸管理、动物的急救、呼吸治疗等。其控制准确、方便实用,不需要高压气源,潮气量输出精确,性能稳定。一般以电机为动力,由驱动电路控制,有节律地输出气流,经吸气管进入动物肺内,使肺扩张,以达到气体交换的目的。

●参考使用方法

1、呼吸机的安置:呼吸机要放置到平稳坚实的地面或实验台上。

2、接通电源,打开呼吸机。

3、设置好呼吸参数:按照动物种类、体重和实验要求,设置相应的潮气量、呼吸频率和吸呼比。

4、麻醉动物,行气管插管术,连接气路:用连接管分别将“Y”型气管插管的两个分支与呼吸机的出气和进气口连接。“进”接呼气管,“出”接吸气管。

5、确定气路连接良好,无漏气。

6、根据动物呼吸情况,调节呼吸机有关参数,使动物呼吸状态良好,无缺氧等异常状态。

●注意事项

1、严禁覆盖呼吸机后面的进气口和出气口。

2、严禁阻塞呼吸机前的出气口。

3、勿让任何液体浸入机内,否侧会损坏呼吸机,导致危险。如果贱入液体,请立即断电。

4、关闭电源后,要等待至少10秒才能再次打开电源。

5、呼吸机内无可自行维修部分,拆机将损坏仪器,请勿拆机。

颅脑损伤仪

●功能

自由落体脑损伤模型打击器是用于制作大鼠小鼠的脑损伤模型,对大鼠和小鼠的脑部进行定位后,定点定力地打击大小鼠的脑部,造成大小鼠脑损伤,仪器操作简单,原理经典,自由落体脑损伤模型打击器是按自由落体原理制作的一款打击器,主机用于动物脑损伤模型的制作。自由落体脑损伤模型打击器由撞针、砝码、金属管和脑定位仪四部分组成。

●参考使用方法(以大鼠脑损伤为例)

俯卧位固定大鼠头部及四肢,消*后,于正中线由前向后切开头皮,切口后端再以45度角向左前下延伸,形成三角型皮瓣。向头侧翻开皮瓣,剥离骨膜,充分暴露左侧颅骨。牙科微孔钻钻出一个直径6mm的圆形骨窗,钻孔过程注意保护脑膜。将撞杆头端置于骨窗硬脑膜外,其外垂直金属套管,用40克打击棒沿外周金属套管从20cm高度自由落下冲击撞针,下落冲击力4×20cm.g,造成大鼠左侧大脑半球局部脑挫裂伤。

自由落体脑损伤模型打击器是用于制作大鼠小鼠的脑损伤模型,对大鼠和小鼠的脑部进行定位后,定点定力地打击大小鼠的脑部,造成大小鼠脑损伤,仪器操作简单,原理经典,自由落体脑损伤模型打击器是按自由落体原理制作的一款打击器,主机用于动物脑损伤模型的制作。自由落体脑损伤模型打击器由撞针、砝码、金属管和脑定位仪四部分组成。

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